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在靶标DNA区域中设计一对20bp左右的oligo DNA, 可以通过以下在线工具设计:
1 麻省理工学院的CRISPR Design:
http://crispr.mit.edu/
2 德国癌症研究中心的E-Crisp:
http://www.e-crisp.org/E-CRISP/designcrispr.html
gRNA(small guide RNA简称),是CRISPR基因敲除敲入系统中重要的组成部分,早先发现的guide RNA,由两部分组成—tracRNA和crRNA, 两部分融合表达后,即sgRNA也能很好的行使guide的功能,与cas9蛋白结合,引导cas9酶靶向基因组DNA进行剪切。 SgRNA脱靶问题一直备受关注,如何设计特异性好的靶点成为大家关注的焦点,很多实验室开发了不同的设计软件,大体原则如下:
(1)对于sgRNA的长度,一般应为20 nt左右;
(2)对于sgRNA序列的碱基组成,可选3'末端含GG的sgRNA,同时sgRNA种子序列尽量避免以4个以上的T结尾,GC%含量最佳为40%~60%;
(3)sgRNA的种子序列与脱靶位点的匹配数尽可能低
(4)如果构建U6或T7启动子驱动sgRNA的表达载体,需考虑sgRNA的5' 碱基为G或GG,以提高其转录效率;
(5)对于sgRNA靶向基因的结合位置,如需造成基因移码突变,需尽量靠近基因编码区的ATG下游,最好位于第一或第二外显子;
(6)检查sgRNA靶向结合位点基因组序列是否存在SNPs;
(7)如采用Cas9单切口酶,设计paired-gRNA需考虑成对sgRNA的间距;
(8)全基因脱靶效应分析,需考虑脱靶位点最大允许几个错配碱基数,建议最少5个碱基。重点考察种子序列和非种子序列碱基错配数,以及脱靶位点是否位于基因编码区等,另外还可考察是否存在碱基插入或缺失的脱靶位点。
另外SgRNA的活性与CRISPR系统的突变效率直接相关,好的sgRNA靶点,会带来更高的突变效率,更多的阳性克隆,在后期筛选和鉴定时都能事半功倍,所以在着手进行基因编辑前,设计并找到有活性的靶点至关重要。通常在设计特异性靶点后,需要进行体外细胞活性筛选,筛选出有效的靶点用于后续实验。
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