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[猪病毒] 揭开蓝耳防控的神密的面纱

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发表于 2016-8-30 16:08:51 | 只看该作者 回帖奖励 |倒序浏览 |阅读模式
揭开蓝耳防控的神密的面纱
—从猪繁殖与呼吸综合征病毒的致病机理出发来制定猪场控制方案
彭克高
云南智康源农牧科技有限公司
一、猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)的致病机理
    PRRSV通过呼吸道或生殖道侵入猪体后,主要侵害肺泡及血液等组织的巨噬细胞。首先通过呼吸道与猪肺泡巨噬细胞(PAM)上的受体结合,再经胞吞作用进入PAM,并在PAM内迅速增殖(特别是尚未成熟的PAM最适合PRRSV繁殖),使PAM破裂、溶解、崩溃,数量减少,存活的PAM也表现功能低下,使肺泡功能发牛障碍,进而仔猪表现典型的呼吸道症状。这种对未成年猪PAM的嗜好与发病严重常见于仔猪相一致(Mengeling等,1995[7])。感染猪的PAM显著减少,其比例可由正常的90%降至50%甚至更少。在PAM中增殖的PRRSV还可转移到局部淋巴组织的巨噬细胞和单核细胞内进一步增殖(Bautisa等,1996[8])。有试验表明感染PRRSV后3~14d内血液中的淋巴细胞及单核细胞也显著降低。由于巨噬细胞的大量破坏,使其对异物的非特异性吞噬清除功能大为降低,机体的非特异性免疫功能下降。同时因PRRSV的增殖导致PAM减少,PAM依赖于超氧负离子而发挥杀菌作用的功能也随之下降,易继发其它细菌或病毒感染,而使疾病的症状加重,如PRRS患猪可继发感染猪伪狂犬病、副猪嗜血杆菌病、猪链球菌病、猪圆环病毒2型等(Van Alistine等,1996[9]),这是PRRS常和其它疾病同时存在的根本原因。
    PRRSV随着PAM的大量崩解而进入血液循环及淋巴循环,在血液巨噬细胞和单核细胞内增殖,并分布到全身各组织器官的巨噬细胞内,导致病毒血症的出现及全身淋巴结的肿大和相应器官不同程度的损伤。猪在接种病毒后24h可出现病毒血症,平均持续约28d,最长可达56d。随着病毒在PAM、淋巴结等处的大量增殖,可在数小时至数天内造成肺、淋巴结的损伤和微循环障碍,主要表现为特征性间质性肺炎和淋巴结的肿大,支气管坏死和肺的广泛性出血,下颌淋巴结、肠淋巴结及扁桃体弥散出血及水肿,但较少出现耳部发绀的症状。PRRSV可感染公猪生殖系统,导致睾丸内精子数量减少,公猪表现繁殖性能降低,并通过精液将PRRSV传染给母猪,引起母猪的繁殖障碍(Sur等,1998[10])。
   PRRSV在感染猪体内能诱发中和抗体的产生,但低滴度的中和抗体(亚中和水平抗体)不但不能有效清除血液中的病毒,反而与病毒成病毒--抗体复合物,病毒借助抗体的Fc片段与Fc受体阳性细胞(如PAM等)结合,促进病毒进入细胞而建立感染(Yoon等,2001[11]),亦即所谓的抗体依赖性增强作用(antibody-dependent enhancement,ADE),进而导致持续性感染。在妊娠后期的胎儿已出现主动免疫应答,产生的抗体对经胎盘感染的PRRSV出现ADE效应,这可能是PRRSV感染以妊娠母猪在怀孕后期流产为特征的主要原因之一;另外,仔猪对PRRSV的易感性与亚中和水平母源抗体之间有关,说明PRRSV的致病机理与ADE有关(仇华吉等,1999[12])。PRRSV的ADE现象在体内和体外都已被证实,在PAM培养物中加入一定滴度的PRRSV抗体,可使PRRSV增殖滴度提高10~100倍;在病毒中加入一定的PRRSV抗体,再注射妊娠中期的胎儿,结果致病性显著高于单独注射PRRSV,同时在临床上常见到刚断奶仔猪呼吸道症状比育成猪严重得多,表明ADE对PRRSV的致病性有重要影响,也说明PRRSV抗体在不同水平时所起的作用完全不同,就象一把“双刃剑”,妨碍了PRRS的免疫防制和根除。
    PRRSV另一个重要生物学特征是在猪体内存在持续感染(persistent infection),即病毒在猪体内持续存在,但不表现临床症状,可持续数月甚至更长时间,导致长期的病毒血症。研究结果表明,PRRSV引起的病毒血症在猪群中可持续6~7周,甚至达16个月。持续感染与宿主因素、病毒因素等有关:①处于亚临床感染的猪常伴有病毒血症,这常被人们所忽视,尽管病毒血症持续时间长短不一,但亚临床感染的猪已成为PRRSV的主要携带者和重要的传染源,不仅有向外界排毒的可能,且在孕后感染胎儿,产下病毒血症的仔猪,感染健康猪,导致PRRSV在猪群中的循环传播,成为PRRSV持续性感染的重要原因;②在病毒方面,
PRRSV嗜好在PAM、单核细胞等免疫相关细胞中增殖,导致免疫细胞的损伤,造成猪的免疫抑制(SUR);③因PRRSV具有广泛的抗原变异性,特别是在病毒粒子表面具有诱导中和抗体功能的囊膜糖蛋白(GP5/E、GP4、GP3)抗原表位发生抗中和突变时,使之得以逃避免疫系统的识别和清除,造成长期的病毒血症和持续性感染,并诱发继发感染;④具有诱导中和抗体功能的囊膜糖蛋白(GP5/E、GP4)如过度糖基化,会影响中和抗体发挥中和病毒的作用。在持续性感染期间,PRRSV仍以较低的速度复制,病毒基因组5’非编码区、3’非编码区和核衣壳蛋白基因(0RF7)都保持高度的遗传稳定性,表明持续性感染的出现并不是多聚酶识别位点或转录起始位点突变的结果,而是糖蛋白基因(ORF2~5)和膜基质蛋白基因(ORF6)的突变与持续性感染有关。
    PRRSV第3个重要的生物学特征是存在较强的基因突变,除病毒基质蛋白M基因和核衣壳蛋白N基因较保守外,其他基因的保守性较低。各分离株的毒力、抗原性差异较大,所引起的呼吸道症状、繁殖障碍的能力和病变的差异也较大。这种变异性使机体被动免疫和主动免疫对PRRSV的识别能力降低,从而PRRSV能逃避免疫系统的识别及中和抗体或细胞毒T细胞的杀伤作用。一般而言,欧洲分离到的毒株为欧洲型。美洲及其他地区分离到的毒株为美洲型。目前中国分离到的PRRSV毒株经鉴定均为美洲型,但推测欧洲型毒株在中国的出现只是时间问题。由于PRRSV具有独特的ADE作用、持续性感染及较强的抗原基因变异性的生物学特性,加之社会因素(不良饲养管理、引种等)与自然因素(空气传播、鸟类带毒等)的影响,使得PRRS成为极难控制与净化的猪传染病之一。
二、猪繁殖与呼吸综合征病毒致病四大特点与难点
1、PRRS主要侵害巨噬细胞,特别是肺内巨噬细胞,通过细胞稠忘崩解和免疫抑制,导致相关病毒和细菌病原并发和继发感染。
2、在猪体内存在持续感染(persistent infection),即病毒在猪体内持续存在,但不表现临床症状,可持续数月甚至更长时间,导致长期的病毒血症。导致猪体长期带毒使猪体处于亚健康状态,在平衡打破时而发病。
3、抗体依赖性增强作用(antibody-dependent enhancement,ADE)的不利影响。
4、较强的基因突变使机体被动免疫和主动免疫对PRRSV的识别能力降低,从而PRRSV能逃避免疫系统的识别及中和抗体或细胞毒T细胞的杀伤作用。
三、猪繁殖与呼吸综合征病毒致病重点及防控关注重点
1、母猪怀孕后期胎儿已出现主动免疫应答,产生的抗体对经胎盘感染的PRRSV出现ADE效应,这可能是PRRSV感染以妊娠母猪在怀孕后期流产为特征的主要原因之一。
2、6周龄前的断奶仔猪是PRRSV攻击的重点。PRRSV进入体内后首先攻击、占据肺泡巨噬细胞,并在其中复制和繁殖、研究表明小于6周龄仔猪的肺泡巨噬细胞对PRRSV最易感,同时由于新生仔猪肺泡巨噬细胞数量少,只有成年猪的1/14,且其吞噬活性也较低、免疫功能尚不成熟,因此PRRSV对6周龄前的未成年猪肺泡巨噬细胞破坏性最大,临床感染情况也更加严重。
3、作蓝耳疫苗特别是更换疫苗品牌或毒株时,是部份猪中和抗体处于低水平,反而促进野毒的大量繁殖,打破原有的平衡。
4、引猪并群时,打破原有的平衡。
5、霉菌毒素、圆环病毒的协同导致免疫抑制,支原体、副猪嗜血杆菌、链球菌与猪丹毒杆菌影子病的伴随。
四、云南智康源多年防控蓝耳病的实践
1、选用世界第一个自然弱毒、安全稳定,对经典毒株高保护率和高致病性变异株有较高交叉保护率,有国家推荐重点产专利免疫增强剂的稀释液的,唯一可以滴鼻以避开母源抗体干扰的优质蓝耳病弱毒苗疫苗-文易舒。
2、在更换毒株疫苗时,先用优质替米考星(呼原泰)500克/吨料+优质免疫增强剂普壮素1000克/吨料+安普IV号1000克/吨料5-7天后,再注射疫苗蓝耳病疫苗。
3、引猪的适应期混群前优质替米考星(呼原泰)500克/吨料+优质免疫增强剂普壮素1000克/吨料+安普IV号1000克/吨料5-7天后再混群
4、猪群处于蓝耳病不稳定时对猪群,特别是怀孕后期及断奶-6周龄的仔猪,优质替米考星(呼原泰)500克/吨料+优质免疫增强剂普壮素1000克/吨料+安普IV号1000克/吨料5-7天,根据情况补充免疫。
参考文献
[1] 童光志,周艳君,郝晓芳等.高致病性猪繁殖与呼吸综合征病毒的分离鉴定及其分子流行病学分析[J].中国预防兽医学报,2007,29(5):323 ~327.
[2] Conzelmann K,Visser N,Van Woensel P,et a1.Molecular characterization of porcine epidemic abortion and respiratory virus.Amember of the arterivirus group[J].Virology,1993,329~339.
[3] Meulenberg J,Hulst M M,De Meijer E J,et a1.Lelystad virus-belongs to a new family,
comprising lactate dehydrogenase elevating virus,equine arteritis virus,and simian haemorrhagic fever virus[J].Arch Virol(suppl),1994,9:441~448.
[4] Benfield D,Harris L,Nelson E,et a1.Properties of SIRS virus isolate ATCC VR-2332 in the United states and preliminary characterization of a monoantibody to this virus[J].Am Assoc Swine Pract Newsletter,1992a,4(4):19~21.
[5] Benfield D,Nelson E,Collins J E,et a1.Characterization on swine infertility and respiratory syndrome (SIRS) virus (isolate ATCC VR-2332)[J].Vet Diagn Invest,1992b,4:127~133.
[6] Pastemak A O,Gultyaev A P,Spaan W J M,et a1.Gentic manipulation of arterivius alternative mRNA leader-body junction sites reveals tight regulation of structural protein expression[J].Virol,2004,74:11642~11653.
[7] Mengeling W L,Vorwald A C,Lager K M,et a1.Diagnsis of porcine reproductive and respiratory[J].Vet Diagn Invest,1995-7:3~16.
[8] Bautisa E M,Meulenberg J M,Choi C S,et a1.Structural polypeptides of the American(VR-2332)strain of porcine reproductive and respiratory syndrome (PRRS) virus[J].Arch Virol,1996,141:1357~1365.
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[10] Sur J H,Doseter F A,Zimmerman J J,et a1.Excretion of porcine of porcine reproductive and respiratory syndrome virus[J].Vet Pathol,1998.36:506~514.
[11] Yoon K J,Wu L L,Zimmerman J J,et a1.Field isolate of porcine reproductive and respiratory syndrome virus(PRRSV)vary in their susceptibility to the humoral immune response to porcine reproductive and respiratory syndrome virus parental and attenuated strains[J].Virus Res,2001.79:189
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[12] 仇华吉,童光志.抗体依赖增强作用的免疫生物学特点及意义[J].中国兽医科技,
1999,29(7):19~20.

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